Сухум 30 секунд: Яндекс Карты — подробная карта мира

В каких местах возле 7 стрит стоит побывать?

Вам стоит посетить Сухумский ботанический сад, что в 1,9 км.

Адрес

Ладария 7 Ладария 7, Сухум, Грузия, 384900, Abkhazia

Посмотреть карту

Важная информация

Регистрация заездас 02:00-15:00БЕСПЛАТНОРегистрация отъездас 11:00-12:00БЕСПЛАТНО

Домашние животныеРазмещение домашних животных не допускается.

+ Еще- Скрыть

Транспорт

+ Еще- Скрыть

Нужен трансфер?

Вы можете забронировать трансфер после завершения бронирования в отеле.

Совет: Рассмотрите варианты бронирования с возможностью бесплатного аннулирования. Это позволит вам оставаться гибкими, если понадобится отменить поездку из-за распространения COVID-19.

Спасибо

nochi.com uses cookies that are strictly necessary for its functioning. We do not collect analytical and marketing cookies.OK

Спирт, используемый для обработки места венепункции, не подвергает опасности измерение содержания алкоголя в крови и плазме с помощью парофазной газовой хроматографии и ферментативного анализа

Biochem Med (Загреб). 2017 15 июня; 27(2): 398–403.

Published online 2017 Jun 15. doi: 10.11613/BM.2017.041

, ^{1, 2} , ^{1, 3} , ⁴ , ² , ² and ⁴

Информация об авторе Примечания к статье Информация об авторских правах и лицензиях Отказ от ответственности

Введение

Это исследование было направлено на то, чтобы установить, может ли спиртовой антисептик, протертый или не протертый перед венепункцией, поставить под угрозу тестирование алкоголя с помощью коммерческого ферментативного анализа и эталонного метода парофазной газовой хроматографии (ГХ).

Материалы и методы

Венозная кровь была взята у 23 здоровых добровольцев двумя последовательными процедурами. При первом заборе крови 2 мл спиртового антисептика (0,5% хлоргексидин, 70% этанол) наносили на мерную салфетку, место венепункции правой руки очищали, но перед флеботомией антисептику не давали высохнуть. При втором заборе крови 2 мл того же спиртового антисептика помещали на другую калибровочную подушку, очищали место венепункции левого повреждения и тщательно очищали от антисептика перед флеботомией. Этанол измеряли эталонным методом ГХ в цельной крови и плазме с ЭДТА, а также коммерческим ферментативным анализом в плазме с ЭДТА.

Результаты

Ни один субъект не жаловался на ощущение особого зуда, когда перед проколом вены не протирали спиртом. Концентрация алкоголя во всех образцах плазмы с ЭДТА всегда была ниже предела обнаружения ферментативного анализа (, т.е. , 2,2 ммоль/л; 0,1 г/л). Точно так же концентрация алкоголя также не определялась с помощью эталонного метода ГХ (, т. е. , <0,22 ммоль/л; 0,01 г/л) в плазме с ЭДТА и цельной крови.

Вывод

Кажется разумным заключить, что использование этанолсодержащих антисептиков перед венепункцией не может быть причиной ложных или ложноположительных результатов измерения алкоголя, по крайней мере, когда можно выполнить идеальные венепункции.

Ключевые слова: лабораторные исследования, диагностика, алкоголь, ошибки, преаналитический этап со сбором анамнеза, медицинским осмотром, измерением артериального давления, частоты сердечных сокращений и температуры ( 3 ). Взятие крови является важной практикой для получения подходящего материала (, т. е. , цельная кровь, сыворотка или плазма), с помощью которого можно проводить подавляющее большинство лабораторных тестов ( 4 ). Независимо от того, какое из многих существующих руководств по сбору крови следует флеботомисту, необходимость точной дезинфекции кожи в месте венепункции всегда считается необходимым мероприятием для предотвращения бактериемии. В частности, рекомендации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) требуют, чтобы место венепункции было очищено тампоном, смоченным 70% спиртом, после чего спирту нужно дать высохнуть не менее 30 секунд, прежде чем прокалывать вену (9).0037 5 ). Алкоголь предпочтительнее повидон-йода из-за того, что заражение крови этим последним антисептиком может привести к ложно повышенным значениям калия, фосфора или мочевой кислоты ( 5 ). Документ h4-A6 Института клинических и лабораторных стандартов (CLSI) также требует обязательной дезинфекции кожи 70% изопропиловым спиртом или этанолом перед венепункцией ( 6 ). Как и в рекомендациях ВОЗ, CLSI также рекомендует, чтобы спирт полностью высох перед введением иглы в вену (9).0037 6 ). Хорватское общество медицинской биохимии и лабораторной медицины опубликовало национальные рекомендации, в которых рекомендуется тщательно дезинфицировать место венепункции 70% изопропиловым спиртом или этанолом, помещенным на стерильную вату или марлевую салфетку перед взятием крови ( 7 ). Примечательно, что при измерении содержания алкоголя в крови хорватские руководства также рекомендуют использовать безалкогольные дезинфицирующие средства (, т.е. , эфир или бензол). Наконец, в рекомендациях Итальянского общества клинической биохимии и клинической молекулярной биологии (SIBioC) рекомендуется, чтобы кожа в месте венепункции была очищена соответствующим спиртовым антисептиком, который затем должен высохнуть перед пункцией вены (9).0037 8 ).

Лабораторное определение содержания алкоголя в цельной крови, сыворотке или плазме крови, помимо его использования в судебной медицине для получения подтверждающих доказательств нарушений вождения, имеет решающее значение для диагностики злоупотребления алкоголем или токсичности ( 9 , 10 ). Несмотря на то, что парофазная газовая хроматография (ГХ) остается золотым стандартом измерения алкоголя в целях судебной медицины, оценка содержания алкоголя в рутинных клинических лабораториях обычно выполняется ферментативными методами, большинство из которых основано на методе алкогольдегидрогеназы (9). 0037 11 , 12 ). Использование ферментативных тестов в клинической практике оправдано многими практическими причинами, такими как пригодность для автоматизации, более короткое время выполнения (TAT), более низкие затраты и отсутствие необходимости в специализированном персонале для проведения теста по сравнению с GC.

За исключением рекомендаций Хорватского общества медицинской биохимии и лабораторной медицины, указание на использование этанола или других алкогольных антисептиков перед забором крови является одним из общих аспектов всех других руководств. Хотя два отдельных исследования ясно продемонстрировали, что отказ от протирания спиртом не связан с ложным гемолизом или разбавлением образца, вопрос потенциального загрязнения образца спиртом, используемым для промывания места венепункции, остается предметом дискуссий (9).0037 13 , 14 ). Использование спирта для очистки места венепункции признано возможным источником загрязнения образцов крови с 1976 года ( 15 ). Кроме того, также было продемонстрировано, что алкоголь может всасываться через неповрежденную кожу взрослых людей, что приводит к едва измеримому уровню алкоголя в крови, составляющему от 0,01 до 0,04 ммоль/л ( 16 ). Риск заражения образцов крови может быть увеличен, если флеботомист не дает спирту высохнуть в течение как минимум 30 секунд перед проколом вены, что оправдано для предотвращения длительного наложения жгута и последующего риска гемоконцентрации и ложного увеличения. некоторых измеримых аналитов в крови ( 17 ). Примечательно, что этот аспект может иметь существенное судебно-медицинское значение, поскольку предел содержания алкоголя в крови (BAC) при вождении в нетрезвом виде в Европе составляет в среднем 10,8 ммоль/л (, т.е. , 0,5 г/л), но колеблется в Румыния, Словакия, Венгрия и Чехия, до 17,4 ммоль/л (, т.е. , 0,8 г/л) на Мальте и в Соединенном Королевстве ( 18 ). Что еще более важно, во многих европейских странах, включая Хорватию, Чешскую Республику, Германию, Венгрию, Италию, Литву, Румынию, Словакию и Словению, предел содержания алкоголя в крови для водителей-новичков установлен на уровне 0 ммоль/л (9). 0037 18 ). Хотя некоторые местные судебно-медицинские нормативные акты в настоящее время не рекомендуют использовать спиртосодержащие антисептики для очистки кожи перед забором крови для анализа на алкоголь ( 19 ), реальная мировая практика часто отличается от теории, поскольку исследования показывают, что использование спиртосодержащих антисептиков не рекомендуется. на самом деле обычное дело при заборе крови на BAC ( 20 ). Это неудивительно, поскольку приобретение пробирок для крови, интегрированных систем сбора крови, а также других инструментов для кровопускания, таких как (спиртовые) антисептики, жгуты, ватные или калибровочные подушечки, в настоящее время регулируется региональными или национальными тендерами во многих странах мира, поэтому что местная закупка этих материалов для определенных типов забора крови больше не разрешена некоторыми администрациями больниц (9).0037 21 ).

Таким образом, целью данного исследования было выяснить, может ли использование спиртосодержащего антисептика, а также отказ от протирания спиртом перед венепункцией влиять на измерение содержания алкоголя в плазме и цельной крови с использованием эталонного парофазного анализа. Техника ГХ и обычный ферментативный анализ.

Дизайн исследования и забор крови

Исследуемая популяция состояла из 23 предположительно здоровых лаборантов (18 женщин и 5 мужчин; средний возраст 49 лет).± 8 лет; индекс массы тела 24,7 ± 4,7 кг/м ² ), добровольно принявших участие в данном исследовании. Соблюдались две последовательные процедуры сбора венозной крови у каждого добровольца, который воздерживался от приема пищи и употребления алкогольных напитков в течение не менее 8 часов до исследования. Первый забор крови проводили на правой руке следующим образом. С помощью пипетки (Eppendorf Reference 100–1000 мкл пипетка; Eppendorf, Марбург, Германия) наносили 2 мл спиртового антисептика (0,5% диглюконата хлоргексидина и 70% этанола; Neoxinal Alcolico; Nuova Farmec, Верона, Италия) на 30-мм предварительно упакованная калибровочная подушка (Luigi Salivari SPA, Флоренция, Италия). Это количество алкоголя соответствует примерному объему, который медсестры в нашей больнице вручную помещают на измерительную пластину. Накладывали жгут, очищали место венепункции, не давали антисептику высохнуть и в течение 5 секунд после очищения вводили иглу в вену. Кровь собирали в вакуумированную пробирку объемом 6 мл, содержащую K ₂ ЭДТА (Vacutest Kima, содержит 10,8 мг спрея K ₂ ЭДТА, код 135400; Kima, Падуя, Италия). Затем был проведен второй забор крови на левой руке следующим образом. Та же самая пипетка (Eppendorf Reference) была использована для помещения 2 мл того же спиртового антисептика (Neoxinal Alcolico; Nuova Farmec, Верона, Италия) на другую предварительно упакованную калибровочную подушку диаметром 30 мм (Luigi Salivari SPA, Флоренция, Италия). Наложили жгут, очистили место венепункции, но антисептик тщательно высушил с помощью другого ватного тампона диаметром 30 мм круговыми движениями от центра к периферии в соответствии с рекомендациями Хорватского общества медицинской биохимии и лабораторной медицины (9).0037 7 ). Иглу окончательно вводили в вену через 5 секунд после высыхания антисептика. Кровь собирали в другую вакуумированную пробирку объемом 6 мл, содержащую К ₂ ЭДТА (Кима, Падуя, Италия).

При каждой венепункции кровь собирали непосредственно в пробирку для откачанной крови через прямую иглу калибра 19. Все процедуры венепункции ( т.е. ., очищение кожи и взятие крови) были стандартизированы в соответствии с национальными рекомендациями ( 8 , 22 ) и выполняется одним и тем же квалифицированным флеботомистом. Во всех случаях игла извлекалась из вены после того, как пробирка для крови была полностью заполнена и извлечена из держателя, как при оптимальной венепункции. Во время венепункции также тщательно избегали контакта между иглой и калибровочной подушечкой. Сразу после сбора пробирки с кровью перемешивали 4-кратным осторожным переворачиванием. Затем кровь в каждой первичной пробирке разделяли на две идентичные аликвоты, первую из которых использовали для проведения ГХ-анализа, тогда как вторую использовали для ферментативного тестирования. Обе аликвоты всегда хранили закрытыми до проведения измерений. Тестирование на алкоголь проводилось с помощью эталонной методики ГХ с использованием как крови с ЭДТА, так и плазмы с ЭДТА, тогда как ферментативная оценка выполнялась с использованием плазмы с ЭДТА. Плазму с ЭДТА получали после центрифугирования аликвот цельной крови при 3000 g в течение 15 мин при комнатной температуре.

Методы

Концентрацию этанола измеряли с помощью эталонной методики CG как на ЭДТА в крови, так и в плазме. Вкратце, этанол сначала измеряли в цельной крови, открывая пробирку и удаляя 100 мкл цельной крови. Затем образец немедленно закрывали, чтобы предотвратить испарение спирта, центрифугировали для отделения плазмы от клеток крови и, наконец, измеряли концентрацию этанола в плазме с ЭДТА. Измерение содержания алкоголя с помощью эталонного метода газовой газовой хроматографии в свободном пространстве было выполнено с использованием полностью оптимизированного анализатора паровой газовой хроматографии Young Lin 6100 с усовершенствованным пневматическим управлением и пламенно-ионизационным детектором (Young Lin Instrument Co. , Аньян, Корея). И плазму с ЭДТА, и цельную кровь смешивали 1:5 с внутренним стандартом (трет-бутиловый спирт в концентрации 0,09).75 г/л; Carlo Erba Reagents, Cornaredo, Италия). В систему вводили общий объем образца 1250 мкл. Температура шприца составляла 80°С, а изотермическое разделение проводили при 40°С. Внутренний стандарт качества (Carlo Erba Reagents, Cornaredo, Италия) с концентрацией этанола 5,4 ммоль/л также измерялся каждые 5 испытуемых образцов. Нижний предел обнаружения этой методики составляет 0,22 ммоль/л (, т.е. , 0,01 г/л).

Концентрацию алкоголя в плазме ЭДТА также измеряли с помощью анализатора Roche Cobas 6000 (Roche Diagnostics GmbH, Мангейм, Германия) с оригинальным коммерческим реагентом Roche (Roche Diagnostics GmbH, Мангейм, Германия), основанным на алкогольдегидрогеназном методе. . В предыдущем исследовании было обнаружено, что погрешность этого анализа составляет 2,4% при концентрации этанола в плазме 31,6 ммоль/л ( 23 ), в то время как диапазон измерения теста заявлен производителем в диапазоне от 2,2 до 108 ммоль/л.

Все испытуемые подписали письменное согласие на участие в этом исследовании, которое проводилось в соответствии с Хельсинкской декларацией, в соответствии с положениями соответствующего местного законодательства и было одобрено местным Этическим комитетом (Университетская клиника Вероны, Верона, Италия – SOPAV2, номер протокола 35747, дата утверждения: 25 июля 2016 г.).

Ни один субъект не жаловался на ощущение особого зуда, когда перед проколом вены не протирали спиртом. Установлено, что концентрация алкоголя во всех образцах плазмы с ЭДТА всегда ниже предела обнаружения ферментативного анализа (, т.е. , < 2,2 ммоль/л; < 0,10 г/л). Точно так же концентрация алкоголя также не определялась эталонным методом ГХ (, т.е. , <0,22 ммоль/л; <0,01 г/л) во всех образцах плазмы и цельной крови с ЭДТА.

Ранее были опубликованы противоречивые данные об измерении содержания алкоголя при обработке места венепункции спиртосодержащими антисептиками.

Первое предупреждение о возможных помехах от использования спиртовых антисептиков для очистки места венепункции было опубликовано Мюллером и Хундтом в 1976 ( 15 ). В своем элегантном исследовании авторы собрали три последовательных вакуумированных пробирки с кровью от каждого из 10 здоровых добровольцев для измерения концентрации этанола с помощью ГХ. Кожу обрабатывали антисептиком, содержащим 10 % хлоргексидина и 70 % этанола. До того, как произошло испарение алкоголя, игла была введена в вену, и первые две пробирки с кровью были полностью заполнены, тогда как игла была извлечена из вены, пока третья пробирка с кровью все еще аспирировалась. Важно отметить, что присутствие этанола на коже не приводило к измеримой концентрации алкоголя в крови в первых двух пробирках, в то время как измеримая концентрация алкоголя в крови была обнаружена в третьей пробирке у восьми из десяти испытуемых со значениями алкоголя в крови между 0,4 — 743,9ммоль/л.

В следующем исследовании Goldfinger и Schaber измерили концентрацию алкоголя с помощью ферментативного анализа у 25 неотложных пациентов после сбора крови спиртовой прокладкой на одной руке и не содержащим спирта бактерицидным раствором на другой ( 24 ). Никакой существенной разницы в BAC, полученной любым из методов подготовки кожи, не наблюдалось.

Противоположные результаты были опубликованы Peek et al. ( 25 ). Вкратце, авторы собрали кровь у 10 здоровых добровольцев во время употребления алкоголя, либо очистив место венепункции абсолютным этанолом на одной руке, либо оставив место венепункции без мазка на противоположной руке. Выявлено значительное повышение концентрации этанола в крови (до 3,9ммоль/л) в образцах, взятых из руки, обработанной этанолом, по сравнению с рукой, не подвергавшейся тампонированию. В отличие от этих результатов концентрация этанола в крови не изменилась при замене этанола изопропанолом.

McIvor и Cosbey измерили BAC с помощью ГХ в свободном пространстве у 20 субъектов, у которых кровь была взята после пропитки места венепункции этанолом, изопропиловым спиртом или безалкогольным цетримидом/хлоргексидином тампона, и пришли к выводу, что умеренное вмешательство этанола может можно оценить, используя тампоны для очистки кожи на спиртовой основе ( 26 ). Malingré изучал возможное влияние очистки места венепункции спиртовым тампоном путем измерения концентрации этанола в крови с использованием как ГХ, так и ферментативного анализа у 50 пациентов в возрасте ≤ 12 лет и у 20 здоровых добровольцев ( 27 ). Ни в одном образце концентрация этанола в крови не поддавалась измерению (, т.е. , < 4,3 ммоль/л во всех случаях). Спорные доказательства были предоставлены Higuchi et al. , который собрал кровь у 40 здоровых людей после обработки места венепункции этанолом или физиологическим раствором (9).0037 20 ). Несмотря на то, что с помощью эталонного метода ГХ не удалось зарегистрировать поглощение кровью этанола или физиологического раствора, когда обеим жидкостям давали высохнуть в течение 1 минуты, минимальное потребление алкоголя (, т.е. , около 0,2 ммоль/л) было отмечено у 40% пациентов. процентов испытуемых, когда венепункцию производили сразу после обработки кожи этанолом ( т.е. ., в течение 5 секунд, как в нашем исследовании). Уровень заражения значительно увеличивался до 70%, когда игла произвольно касалась или протиралась ватным тампоном, пропитанным этанолом.

В последующем исследовании с участием пяти добровольцев Miller et al. , показали, что использование прокладок для подготовки кожи, содержащих 70% изопропилового спирта, вряд ли приведет к ложноположительному уровню этанола в крови при использовании ферментативного анализа, поскольку все результаты теста оказались ниже предела обнаружения анализа (). т.е. ., 1,1 ммоль/л) ( 28 ). Такер и Третьюи провели интересное исследование, основанное на смазывании одной руки 70% раствором изопропилового спирта, которому давали полностью высохнуть перед венепункцией, а другой руки — физиологическим раствором (9).0037 29 ). Концентрация этанола в крови, измеренная с помощью ферментативного анализа, не оказалась статистически значимой между двумя процедурами очистки. Противоположные результаты были получены в другом исследовании, проведенном Йигитом и Арсланом, которые описали случай 20-летнего пациента, который раздавил голову стволом дерева и был доставлен в больницу для оказания неотложной помощи ( 30 ). Анализ крови при поступлении пациента в отделение неотложной помощи показал очень высокий уровень содержания алкоголя в крови (, т.е. 9).0038 ., 98,3 ммоль/л), несмотря на то, что пациент отрицал употребление каких-либо алкогольных напитков. Поскольку медсестра, взявшая кровь, призналась, что использовала спиртовой антисептик для обработки места венепункции, второй образец крови был взят после взятия мазка с кожи повидон-йодом. BAC в этом втором образце составлял 0,07 ммоль/л.

Наши результаты показывают, что недопущение испарения этанолсодержащего антисептика перед венепункцией не связано с измеримым количеством алкоголя в плазме с ЭДТА или цельной крови при использовании как обычного рутинного ферментативного анализа с пределом обнаружения 2,2 ммоль/л (, т.е. ., 0,1 г/л) и эталонной методики ГХ (предел обнаружения 0,22 ммоль/л; 0,01 г/л). Эти результаты, очевидно, относятся к условиям идеальной венепункции, выполненной квалифицированным флеботомистом в соответствии с местными рекомендациями. Таким образом, практика использования спиртовых антисептиков, а также недопущение испарения алкоголя перед пункцией вены могут быть безопасными и относительно безболезненными, когда тест на алкоголь назначается как для клинических, так и для судебно-медицинских целей, и строго соблюдаются рекомендации по венепункции.

По нашим данным, разумно заключить, что использование этанолсодержащих антисептиков перед венепункцией не может считаться серьезной причиной ложных или ложноположительных результатов измерения содержания алкоголя. Тем не менее, поскольку далеко не идеальная венепункция может все же привести к загрязнению собранной крови этанолсодержащими антисептиками, как показано в некоторых предыдущих исследованиях ( 15 , 20 ), мы предлагаем, чтобы сбор образцов крови для тестирование на алкоголь предпочтительно следует повторять всякий раз, когда оно происходит при одном или нескольких состояниях, перечисленных в , и что, возможно, безопаснее дать алкоголю испариться перед выполнением венепункции для судебно-медицинской экспертизы этанола.

Table 1

List of conditions potentially leading to contamination of blood tubes by alcohol-containing antiseptics

Открыто в отдельном окне

2 9 Возможный конфликт интересов : Не объявлено.

1. Лавери И., Ингрэм П. Венепункция: лучшая практика. Стенд Нурс. 2005; 19:55–65. 10.7748/ns2005.08.19.49.55.c3936 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Ялонго С., Бернардини С. Флеботомия, мост между лабораторией и пациентом. Биохим Мед (Загреб). 2016;26:17–33. 10.11613/BM.2016.002 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Бут К.А. Клинические процедуры оказания медицинской помощи. Макгроу-Хилл, Нью-Йорк, США; 2010. ISBN-13: 9780077340087. [Google Scholar]

4. Липпи Г., Сальваньо Г.Л., Монтаньяна М., Франчини М., Гвиди Г.К. Проблемы флеботомии и улучшение качества результатов лабораторных исследований. Клин Лаборатория. 2006; 52: 217–30. [PubMed] [Академия Google]

5. Всемирная организация здравоохранения. Рекомендации ВОЗ по забору крови: лучшие практики флеботомии. Пресс-центр ВОЗ, Женева, Швейцария; 2010. [Google Scholar]

6. Институт клинических и лабораторных стандартов. Процедуры забора диагностических образцов крови путем венепункции; утвержденное руководство – 6-е изд. Документ CLSI h4-A6. Уэйн, Пенсильвания: Институт клинических и лабораторных стандартов; 2007. [Google Scholar]

7. Николац Н., Шупак-Смолчич В., Шимундич А.М., Челап И., Хорватское общество медицинской биохимии и лабораторной медицины. Хорватское общество медицинской биохимии и лабораторной медицины: национальные рекомендации по забору венозной крови. Биохим Мед (Загреб). 2013; 23: 242–54. 10.11613/BM.2013.031 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Lippi G, Caputo M, Banfi G, Buttarello M, Cerotti F, Daves M, et al. Рекомендации по забору венозной крови. Биохим клин. 2008; 32: 569–77. [Google Scholar]

9. Липпи Г., Плебани М. Фармакогеномика метаболизма алкоголя: значение для юридического тестирования. Clin Chem Lab Med. 2011;49:9–11. 10.1515/CCLM.2011.025 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Church AS, Witting MD. Лабораторные испытания на токсичность этанола, метанола, этиленгликоля и изопропанола. J Emerg Med. 1997;15:687–92. 10.1016/S0736-4679(97)00150-9 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Tagliaro F, Lubli G, Ghielmi S, Franchi D, Marigo M. Хроматографические методы определения алкоголя в крови. J Хроматогр. 1992; 580:161–90. 10.1016/0378-4347(92)80534-W [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Logan BK, Lowrie KJ, Turri JL, Yeakel JK, Limoges JF, Miles AK, et al. Рекомендации по токсикологическому расследованию случаев вождения в состоянии наркотического опьянения и ДТП со смертельным исходом. J Анальный токсикол. 2013; 37: 552–8. 10.1093/jat/bkt059 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Salvagno GL, Danese E, Lima-Oliveira G, Guidi GC, Lippi G. Избегание протирания спиртом перед венепункцией не является источником ложного гемолиза. Биохим Мед (Загреб). 2013;23:201–5. 10.11613/BM.2013.023 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Сарма Д., Шарма Б., Шарма Д., Мэтью С. Спирт, используемый в качестве дезинфицирующего средства перед венепункцией, не приводит к гемолизу или разбавлению пробы. J Clin Diagn Res. 2016;10:BC16–8. 10.7860/jcdr/2016/15967.7245 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Müller FO, Hundt HKL. Письмо: Этиловый спирт: заражение образцов крови. S Afr Med J. 1976; 50:91. [PubMed] [Google Scholar]

16. Тернер П., Саид Б., Келси М.С. Кожное всасывание изопропилового спирта из коммерческого антисептика для рук: последствия его использования для обеззараживания рук. Джей Хосп заражает. 2004; 56: 287–90. 10.1016/j.jhin.2004.01.005 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Lima-Oliveira G, Lippi G, Salvagno GL, Montagnana M, Picheth G, Guidi GC. Эффективное сокращение времени наложения жгута после незначительной модификации процедуры сбора крови CLSI H03-A6. Биохим Мед (Загреб). 2013;23:308–15. 10.11613/BM.2013.037 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Европейский совет по безопасности на транспорте. Содержание алкоголя в крови (BAC) Ограничения вождения в нетрезвом виде в Европе. Доступно по адресу: http://etsc.eu/blood-alcohol-content-bac-drink-driving-limits-across-europe. Последнее обращение 1 апреля 2017 г.

19. Тейлор Л.Е., Оберман С., Оберман Т., редакторы. Защита от вождения в нетрезвом виде, 7-е издание. Филадельфия: Aspen Publishers Inc; 2010. [Google Scholar]

20. Higuchi A, Kurihara R, Yoshimoto T, Sano T, Katsumata K, Ishii A, et al. Проблемы с тестированием на содержание алкоголя в крови водителей с тяжелыми травмами доставлены в отделения неотложной помощи в Японии. Leg Med (Токио). 2005;7:299–305. 10.1016/j.legalmed.2005.05.003 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Lippi G, Cornes MP, Grankvist K, Nybo M, Simundic AM, Рабочая группа по преаналитической фазе (WG-PRE) Европейская федерация клинической химии и лабораторной медицины (EFLM). EFLM WG-Преаналитическая фаза заключения: локальная валидация пробирок для сбора крови в клинических лабораториях. Clin Chem Lab Med. 2016;54:755–60. 10.1515/cclm-2015-1274 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Lippi G, Mattiuzzi C, Banfi G, Buttarello M, Caputo M, Daves M, et al. Предложение контрольного листа для забора венозной крови. Биохим клин. 2013;•••:37312–7. [Академия Google]

23. Кочак Ф.Е., Исиклар О.О., Кочак Х., Мерал А. Сравнение стабильности этанола в крови при разных сроках хранения. Биохим Мед (Загреб). 2015;25:57–63. 10.11613/BM.2015.006 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Goldfinger TM, Schaber D. Сравнение концентрации алкоголя в крови при применении безспиртовых и спиртосодержащих кожных антисептиков. Энн Эмерг Мед. 1982; 11: 665–7. 10.1016/S0196-0644(82)80260-6 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Peek GJ, Marsh A, Keating J, Ward RJ, Peters TJ. Влияние взятия мазка с кожи на видимую концентрацию этанола в крови. Алкоголь Алкоголь. 1990;25:639–40. 10.1093/oxfordjournals.alcalc.a045060 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. McIvor RA, Cosbey SH. Эффект использования спиртовых и безалкогольных тампонов для очистки кожи при заборе крови для определения содержания алкоголя с помощью газовой хроматографии. Бр Дж. Клин Практ. 1990; 44: 235–6. [PubMed] [Google Scholar]

27. Малингре М., Верверс Т., Бос С., ван Кестерен С., ван Рейн Х. Алкогольные мазки и венепункция в обычных больничных условиях: не влияет на измерение этанола в крови. Мониторинг наркотиков. 2005; 27: 403–4. 10.1097/01.ftd.0000158868.74618.dd [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Миллер М.А., Розин А., Левский М.Е., Грегори Т.Дж., Кристал С.С. Использование изопропилового спирта для взятия проб этанола в крови не приводит к ложноположительным результатам. J Emerg Med. 2007; 33:9–10. 10.1016/j.jemermed.2006.10.005 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Tucker A, Trethewy C. Отсутствие влияния на уровень алкоголя в крови смазывания мест венепункции 70% изопропиловым спиртом. Emerg Med Australas. 2010; 22:9–12. 10.1111/j.1742-6723.2009.01248.x [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Йигит О, Арслан С. Протирание кожи спиртом может значительно изменить уровень алкоголя в крови. J Emerg Med. 2012;43:718–9. 10.1016/j.jemermed.2011.07.025 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Как научить детей мыть руки

Статья

Советы, как сделать мытье рук привычкой для детей.

ЮНИСЕФ/UNI321602/Эль-Далил

Один из самых дешевых, простых и важных способов уберечь ребенка от болезней – это заставить его часто мыть руки.

Вот несколько советов о том, как превратить мытье рук в здоровую привычку на всю жизнь:
 

1. Объясните преимущества мытья рук

Расскажите ребенку, что мытье рук защищает его от бактерий и вирусов, вызывающих другие вокруг них больны.

Расскажите им о том, что даже несмотря на то, что микробы невидимы, они все же могут быть там.

Объясните им, что регулярное мытье рук так же важно, как чистка зубов или здоровое питание.
 

2. Продемонстрируйте правильные этапы мытья рук

Объясните, что для устранения всех следов бактерий, вызывающих инфекцию, на руках недостаточно быстрой очистки и ополаскивания. Вот пошаговое руководство по эффективному мытью рук:

• Шаг 1. Смочите руки проточной водой
• Шаг 2: нанесите достаточное количество мыла, чтобы покрыть влажные руки
• Шаг 3: Потрите все поверхности рук, включая тыльную сторону рук, между пальцами и под ногтями, не менее 20 секунд
• Шаг 4: Тщательно промойте проточной водой
• Шаг 5. Вытрите руки чистой тканью или одноразовым полотенцем
   

3. Как долго нужно мыть руки?

Руки следует мыть с мылом не менее 20-30 секунд. Самый простой способ определить время — спеть всю песню «С днем ​​рождения» дважды.

То же самое касается использования дезинфицирующего средства для рук: используйте дезинфицирующее средство, содержащее не менее 60% спирта, и втирайте его в руки не менее 20 секунд, чтобы обеспечить полное покрытие. Помните: дезинфицирующее средство для рук может быть токсичным при проглатывании и должно использоваться только под присмотром взрослых.
 

4.

Установите время, когда он должен мыть руки

Ваш ребенок должен часто мыть руки в течение дня. Вот несколько случаев, когда вы всегда должны мыть руки:

• Когда руки явно грязные 
• До и после еды
• После посещения туалета
• После прикосновения к животным и домашним животным
• После сморкания, кашля или чихания
   

5. Превратите это в увлекательное семейное занятие

Вот несколько способов помочь детям вымыть руки, сделав мытье рук более легким и увлекательным для них:

1. Теплая или холодная вода лучше?

Для мытья рук можно использовать воду любой температуры. Холодная и теплая вода одинаково эффективны для уничтожения микробов и вирусов — при условии, что вы используете мыло!
 

2. Важно ли сушить руки?

Микробы легче распространяются с влажной кожи, чем с сухой, поэтому важно полностью высушить руки. Бумажные полотенца или чистые тряпки — самый эффективный способ удалить микробы, не распространяя их на другие поверхности.